Влияние противоопухолевых препаратов, связывающихся с ДНК, на функционирование ДНК-метилтрансферазы мыши Dnmt3aНИР

The impact of DNA-binding anticancer drugs on the functioning of murine DNA methyltransferase Dnmt3a

Источник финансирования НИР

грант РФФИ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 20 марта 2018 г.-20 марта 2019 г. Влияние противоопухолевых препаратов, связывающихся с ДНК, на функционирование ДНК-метилтрансферазы мыши Dnmt3a
Результаты этапа: Ранее в нашей лаборатории были получены данные об ингибировании метилирования ДНК некоторыми препаратами, способными интеркалировать в ДНК (бензо[а]пирен) или связываться с её малой бороздкой (димерные бисбензимидазолы DB(n)). В связи с этим, данный проект направлен на изучение влияния перспективных противоопухолевых препаратов, обладающих способностью связываться с ДНК, на функционирование метилтрансферазы (МТазы) Dnmt3a in vitro. Dnmt3a переносит метильную группу с кофактора S-аденозил-L-метионина в 5 положение цитозина-мишени в CpG-участках ДНК, устанавливая таким образом рисунок метилирования ДНК в эукариотических клетках. Объектами исследования выбраны препараты, интеркалирующие в двойную спираль (доксорубицин и кураксин CBL0137) и располагающиеся в малой бороздке (оливамид LCTA-1599, производное оливомицина А). В работе использован каталитический домен МТазы мыши Dnmt3a (Dnmt3a-CD), сохраняющий активность в отсутствие регуляторного домена. За отчетный период было детально изучено влияние оливамида на функционирование Dnmt3a-CD, а также получены первые данные о влиянии кураксина на метилирование ДНК. 1. Выделение Dnmt3a-CD Dnmt3a-CD экспрессировали в клетках E. coli BL21 (DE3), несущих плазмиду pET28a с геном, кодирующим Dnmt3a-CD, содержащую N-концевой His6-кластер. Выделение фермента производили с помощью металл-аффинной хроматографии на Со2+-содержащей смоле Talon®. Чистота выделенных белковых препаратов была оценена с помощью электрофореза в 12,5% полиакриламидном геле по Леммли и составила >95%. 2. Конструирование ДНК-субстратов Первым этапом работы стала разработка удобной модельной системы для изучения влияния этих препаратов на функционирование Dnmt3a-CD. Для этого были сконструированы 30-звенные ДНК-дуплексы, содержащие метилируемый CG-сайт внутри последовательности GCGC, с которой способен связываться оливамид. Кроме того, последовательность GCGC является участком расщепления эндонуклеазы рестрикции R.Hin6I. В один из ДНК-дуплексов были вставлены флуоресцентные FAM-метки на 5’-концы каждой из цепей. Последовательность ДНК-дуплекса 1: 5-CTGAATACTACTTGCGCTCTCTAACCTGAT 3-GACTTATGATGAACGCGAGAGATTGGACTA Последовательность ДНК-дуплекса 2: 5-FAM-CTGAATACTACTTGCGCTCTCTAACCTGAT 3-GACTTATGATGAACGCGAGAGATTGGACTA-FAM 3. Оливамид Оливамид (“LCTA-1599”) является противоопухолевым антибиотиком группы ауреоловой кислоты (АК), включающей также митрамицин, хромомицины и дурамицин. Противоопухолевое действие оливомицина А связано с его способностью связываться с малой бороздкой ДНК в GC-богатых участках в виде Mg2+-координированных комплексов. Полусинтетический аналог оливомицина А, N,N-диметиламиноэтиламид 1'-дез-(2,3-дигидрокси-н-бутироил)-1'-карбокси-оливомицина А (оливамид) обладает улучшенными фармакологическими свойствами по сравнению с исходным соединением. Влияние этих соединений на метилирование ДНК ранее не изучалось. При связывании с ДНК интенсивность флуоресценции антибиотиков группы ауреоловой кислоты при λвозб 550 нм увеличивается. В связи с этим, связывание оливамида с ДНК-дуплексом 1 было определено по увеличению флуоресценции оливамида при добавлении в смесь ионов Mg2+, необходимых для образования комплексов исследуемых антибиотиков с ДНК. Для исследования влияния оливамида на эффективность реакции метилирования мы использовали метод определения эффективности метилирования ДНК по защите от расщепления эндонуклеазами рестрикции. Для формирования комплекса ДНК с оливамидом ДНК-дуплекс 2 инкубировался с антибиотиком в присутствии ионов Mg2+ с последующим метилированием дуплекса МТазой Dnmt3a. После этого ДНК-дуплекс расщепляли эндонуклеазой Hin6I (G↓CGC, место расщепления указано стрелкой), способной гидролизовать только неметилированную ДНК. Мы обнаружили, что исследуемые антибиотики и ионы Mg2+ не влияют на эффективность расщепления ДНК эндонуклеазой рестрикции (ЭР) Hin6I. Это позволило нам оптимизировать метод и проводить расщепление ДНК сразу после метилирования, без выделения метилированной ДНК и замены буферного раствора. После расщепления смеси анализировали в 20%-ном денатурирующем ПААГ. Для увеличения чувствительности метода успользовали ДНК-дуплекс 2 с двумя флуоресцентными FAM-метками. ДНК-дуплекс 2 расщеплялся с образованием 14-звенного FAM-меченного продукта. Для каждой концентрации антибиотика была рассчитана степень метилирования из соотношения расщепленной и нерасщепленной ДНК, была получена зависимость степени метилирования ДНК от концентрации оливамида. Мы обнаружили, что оливамид, как и оливомицин А, способен ингибировать реакцию метилирования. Значения IC50 для оливомицина А и оливамида составили 6±1 мкМ и 7,1±0,7 мкМ, соответственно. Из полученных данных можно сделать вывод, что исследуемые малобороздочные лиганды являются такими же эффективными ингибиторами Dnmt3a-CD, как и ранее изученный в нашей лаборатории димерный бисбензимидазол DB(11). Для того, чтобы определить, на какую стадию реакции метилирования оказывают влияние исследуемые препараты, мы изучили их действие на стадии образования фермент-субстратного комплекса и формирования ковалентного интермедиата. Первым шагом стало проведение комплексообразования ДНК-дуплекса 2 с Dnmt3a в присутствии различных концентраций оливамида. В этом эксперименте был использован метод поляризации флуоресценции в области флуоресценции FAM-метки, находящейся на 5’-конце ДНК-дуплекса. Связывание фермента с ДНК-дуплексом 2 определялось по изменению поляризации флуоресценции FAM при титровании субстрата МТазой Dnmt3a в присутствии оливамида и S-аденозил-L-гомоцистеина (аналог донора метильной группы S-аденозил-L-метионина). Константы диссоциации (KD) ДНК-белковых комплексов практически не изменялись при добавлении в реакционную смесь 5 или 15 мкМ оливомицина А или оливамида комплекса (KD = 95 ± 3 нМ в отсутствие оливамида и 115 ± 17 нМ в присутствии 15 мкМ оливамида). Таким образом, исследуемые антибиотики не приводили к значимому ухудшению связывания фермента с ДНК-субстратом. На примере оливомицина А было показано влияние малобороздочных лигандов на одну из ключевых стадий реакции метилирования ДНК: образование ковалентного интермедиата в результате нуклеофильной атаки положения С6 цитозина-мишени высококонсервативным остатком цистеина из активного центра С5-МТаз. Образующийся интермедиат нестабилен и быстро распадается с высвобождением продуктов реакции. Показано, что FAM-меченные ДНК-субстраты, содержащие остаток пиримидин-2-она (Z) вместо цитозина-мишени, образуют значительно более стабильные ковалентные интермедиаты с МТазами M.SssI и Dnmt3a, которые могут быть детектированы по флуоресценции FAM-метки в полиакриламидном геле. Поэтому нами были использованы 18-звенные ДНК-дуплексы, содержащие FAM-метку на 5'-концах и остаток Z, расположенный рядом с CG-сайтом. При введении оливомицина А в реакционную смесь перед добавлением МТазы ковалентный интермедиат не образовывался. Учитывая важность контактов Dnmt3a с малой бороздкой ДНК для протекания реакции метилирования, невозможность образования конъюгатов с Z-содержащей ДНК в присутствии оливомицина А может объясняться нарушением контактов каталитической петли Dnmt3a с группами атомов, экспонированными в малую бороздку. Это, в свою очередь, может приводить к затруднению протекания других стадий реакции метилирования, таких, как выведение цитозина-мишени из двойной спирали ДНК. Учитывая сходство структур оливамида и оливомицина А, было сделано предположение об аналогичном механизме влияния оливамида на протекание реакции метилирования ДНК. Возможность связывания антибиотиков группы АК с Dnmt3a-CD была изучена с помощью ряда методов на примере оливомицина А. Добавление Dnmt3a-CD к раствору оливомицина А не приводило к увеличению интенсивности флуоресценции при λвозб 550 нм, а исключение ионов Mg2+, необходимых для связывания исследуемых антибиотиков с ДНК, из реакционной смеси приводило к исчезновению ингибирующего эффекта оливомицина А. Эти факты позволяют сделать вывод о том, что влияние антибиотиков группы АК на метилирование не может объясняться их связыванием с Dnmt3a-CD. Суммируя все полученные результаты, можно сделать вывод о возможном эпигенетическом вкладе в механизм противоопухолевого действия антибиотиков группы АК, включающем ингибирование Dnmt3а. Результаты исследования легли в основу опубликованной статьи (“Биохимия”, 2019, 84(2), с. 229 – 239). 2. Кураксин CBL0137 Кураксин CBL0137 является представителем нового типа противораковых препаратов – производных карбазола. Согласно данным компьютерного моделирования, кураксин способен интеркалировать между парами оснований в ДНК, при этом положительно заряженная -NH-CH-(CH3)2-группа располагается в малой бороздке. В текущем году начаты исследования влияния кураксина на метилирование ДНК и комплексообразование Dnmt3a-CD с ДНК-субстратом. Согласно предварительным результатам, кураксин способен ингибировать метилирование ДНК с IC50 = 14±3 мкМ. Активность Dnmt3a-CD уменьшалась на 87% в присутствии высоких концентраций кураксина (60 мкМ). В процессе работы было также обнаружено ингибирование кураксином эндонуклеазы Hin6I, используемой для определения эффективности метилирования ДНК. В связи с этим, после метилирования ДНК-дуплекса 2 в присутствии кураксина проводили осаждение метилированной ДНК и замену реакционного буфера. Далее, при добавлении кураксина к раствору FAM-меченного ДНК-дуплекса нами было обнаружено увеличение поляризации флуоресценции FAM. Это, во-первых, подтверждает связывание кураксина с выбранным нами ДНК-дуплексом, и, во-вторых, позволит изучать влияние последовательности, длины и других характеристик ДНК-дуплекса на его связывание с кураксином. В следующем году предполагается дальнейшее исследование влияния кураксина на метилирование ДНК. 3. Мутантные формы Dnmt3a Участницей проекта Храбровой Д. А. были выделены мутантные формы мышиной Dnmt3a, соответствующие найденным мутантам Dnmt3a у пациентов при острой миелоидной лейкемии и других гематологических злокачественных заболеваниях. У полученных мутантных форм наблюдались нарушения тех или иных аспектов механизма ферментативной реакции, например, образования фермент-субстратного комплекса или выведения цитозина-мишени из двойной спирали ДНК. Эти свойства позволят нам использовать данные мутанты для изучения механизма действия оливамида и кураксина на способность Dnmt3a метилировать ДНК.
2 20 марта 2019 г.-20 марта 2020 г. Влияние противоопухолевых препаратов, связывающихся с ДНК, на функционирование ДНК-метилтрансферазы мыши Dnmt3a
Результаты этапа: Кураксин (CBL0137) является перспективным производным карбазола, обладающим высокой противоопухолевой активностью и низкой токсичностью к здоровым клеткам [1]. Он способен интеркалировать в ДНК в AT-богатых участках. Ранее мы показали, что интеркалирующие лиганды способны ингибировать эукариотическую ДНК-метилтрансферазу (МТазу) Dnmt3a, осуществляющую de novo метилирование ДНК по 5 положению цитозина-мишени в CpG-участках [2]. Метилирование ДНК является важной формой эпигенетической регуляции и контролирует многие клеточные процессы. В данной работе исследовалось влияние CBL0137 на функционирование Dnmt3a как один из возможных аспектов его противоопухолевого действия. Мы исследовали связывание кураксина с 30-звенным ДНК-дуплексом, меченным 6-карбоксифлуоресцеином и содержащим один CpG-сайт (f-ДНК), а также комплексообразование каталитического домена Dnmt3a (Dnmt3a-CD) с f-ДНК в присутствии CBL0137. Было обнаружено взаимодействие CBL0137 с f-ДНК по увеличению поляризации флуоресценции f-ДНК при введении в анализируемую смесь CBL0137 (λвозб 495 нм, CBL0137 в этой области прозрачен). Константа диссоциации (KD) комплекса f-ДНК-CBL0137 составила 13±4 мкМ. Используя разработанный нами ранее метод определения эффективности метилирования ДНК in vitro [3], мы показали ингибирование реакции метилирования f-ДНК в присутствии CBL0137 с константой IC50, равной 14±3 мкМ. По предварительным данным, CBL0137 затрудняет образование комплекса f-ДНК с Dnmt3a-CD: KD фермент-субстратного комплекса составляла 80±9 нМ в отсутствие CBL0137 и >300 нМ при добавлении в раеакционную смесь 30 мкМ CBL0137. Результаты данной работы свидетельствуют о возможном эпигенетическом вкладе в механизм противоопухолевого действия кураксина CBL0137 и аналогичных препаратов.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".